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當(dāng)前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-微量法微量法生化試劑盒BC6005-100T/48S谷*甘肽還原酶活性系數(shù)檢測試劑盒 微量法

谷*甘肽還原酶活性系數(shù)檢測試劑盒 微量法
產(chǎn)品簡介:

單位

中文名稱
谷*甘肽還原酶活性系數(shù)檢測試劑盒 微量法
有效期
6個(gè)月
儲(chǔ)存條件
-20℃
英文名稱
Glutathione Reductase Activation Coefficient Assay Kit
檢測方法
可見分光光度法
規(guī)格
50T/24S

產(chǎn)品型號(hào):BC6005-100T/48S

更新時(shí)間:2025-08-25

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :2505

服務(wù)熱線

010-50973130

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產(chǎn)品介紹

谷*甘肽還原酶活性系數(shù)(GRAC)檢測試劑盒說明書

微量法

貨號(hào):BC6005

規(guī)格:100T/48S

產(chǎn)品組成:使用前請(qǐng)認(rèn)真核對(duì)試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請(qǐng)及時(shí)聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱

規(guī)格

保存條件

試劑一

液體65 mL×1瓶

2-8℃保存

試劑二

粉劑×1

2-8℃保存

試劑三A

粉劑×1

-20℃保存

試劑三B

液體1 mL×1支

2-8℃保存

試劑四

液體1.2 mL×1支

2-8℃保存

試劑五

粉劑×1

-20℃保存

試劑六

液體20 mL×1瓶

2-8℃保存

試劑七

液體25 mL×1瓶

2-8℃保存

溶液的配制:

1. 試劑二:臨用前加入1.2mL蒸餾水,充分溶解,2-8℃可保存4周;

2. 試劑三:臨用前取試劑三A加入0.537mL試劑三B,充分溶解,-20℃可分裝保存4周,避免反復(fù)凍融;

3. 工作液:臨用前根據(jù)樣本量按照試劑一:試劑二:試劑三:試劑四=40μL:10μL:4μL:10μL64μL1T)的比例配制工作液,現(xiàn)用現(xiàn)配;

4. 試劑五:臨用前加入1.2mL蒸餾水,充分溶解,-20℃可分裝保存4周,避免反復(fù)凍融;

5. 試劑五工作液:臨用前根據(jù)樣本量按照試劑五:蒸餾水=5μL:95μL0.1mL,10T)的比例配制,現(xiàn)用現(xiàn)配。

產(chǎn)品說明:

谷*甘肽還原酶(Glutathione Reductase,GR)是廣泛存在于真核與原核生物中的一種黃素蛋白氧化還原酶,該酶以核黃素衍生物核黃素腺嘌呤二核苷酸(FAD)為輔基,催化NADPH還原氧化型谷*甘肽(G SSG)生成還原型谷*甘肽(GSH),維持巰基和膜蛋白處于還原狀態(tài)。當(dāng)生物體內(nèi)缺乏核黃素時(shí),FAD含量相應(yīng)減少,GR活性也隨之降低,谷*甘肽還原酶活性系數(shù)(GR Activation Coefficient,GRAC)迅速升高,出現(xiàn)唇炎、口角炎、結(jié)膜炎等臨床癥狀。因此,GRAC用于核黃素營養(yǎng)狀況評(píng)價(jià),對(duì)于早期發(fā)現(xiàn)缺乏病患者采取防治措施具有重要意義。

GR催化NADPH還原G SSG,生成GSH,GSH5,5’-二硫代--2-硝 基苯甲酸)(55’-dithiobis-2-nitrobenoic acid,DTNB)反應(yīng)產(chǎn)生2-硝基-5-*甲酸,2-硝基-5-*甲酸在波長412nm處有特征吸收峰,通過412nm處吸光度的變化可計(jì)算GR的活性。根據(jù)加入FAD前后GR活性的變化可計(jì)算得到GRAC。

注意:實(shí)驗(yàn)之前建議選擇2-3個(gè)預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實(shí)驗(yàn)。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進(jìn)行檢測。

需自備的儀器和用品:

可見分光光度計(jì)/酶標(biāo)儀、低溫離心機(jī)、分析天平、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、微量玻璃比色皿/96孔板、可調(diào)式移液槍、研缽/勻漿器/細(xì)胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

操作步驟:具體的操作步驟請(qǐng)見“產(chǎn)品資料"文件

 

注意事項(xiàng):

1. 建議準(zhǔn)備核黃素水平正常的樣本進(jìn)行檢測,方便與核黃素缺乏的樣本進(jìn)行比較;如果沒有核黃素水平正常的樣本,可參考一般核黃素水平正常的樣本GRAC為0.9-1.2

2. 如果樣本測定管吸光值大于1.5,建議將樣本用試劑一稀釋后進(jìn)行測定;如果樣本測定管吸光值接近空白管,可適當(dāng)增大樣本質(zhì)量重新提取或提高加樣表中樣本體積,對(duì)照管、空白管蒸餾水需進(jìn)行相應(yīng)調(diào)整。

3. 樣本蛋白濃度需自行測定。由于提取液中含有一定濃度的蛋白(約0.11mg/mL),所以在測定樣本蛋白濃度時(shí)需要減去提取液本身的蛋白含量。

實(shí)驗(yàn)實(shí)例:

1. 取0.1051g大鼠腎臟樣本,加入1mL試劑一進(jìn)行冰浴勻漿,離心后取上清,按照測定步驟操作,用96孔板測得:A測定=0.370A對(duì)照=0.360,A空白=0.107,計(jì)算得:

GRAC=(A測定-A空白)÷A對(duì)照-A空白)= 1.040。

2. 取10μL人紅細(xì)胞,加入990μL試劑一,充分溶血混勻,離心后取上清,按照測定步驟操作,用96孔板測得:A測定=0.479,A對(duì)照=0.461A空白=0.107,計(jì)算得:

GRAC=(A測定-A空白)÷A對(duì)照-A空白)= 1.051。

3. 取馬血清樣本,直接按照測定步驟操作,用96孔板測得:A測定=0.397,A對(duì)照=0.392A空白=0.107,計(jì)算得:

GRAC=(A測定-A空白)÷A對(duì)照-A空白)= 1.018

參考文獻(xiàn):

[1] Sauberlich H E, Judd J H, Nichoalds G E, et al. Application of the erythrocyte glutathione reductase assay in evaluating riboflavin nutritional status in a high school student population [J]. The American Journal of Clinical Nutrition, 1972, 25(8): 756-762.

[2] Gu CF, Chen YZ, Wang ZY. A study of the activation coefficients of blood glutathione reductase in the evaluation of experimental riboflavin deficiency [J]. Acta Nutrimenta Sinica, 1981, 3(4): 251-260.

[3] Ono S, Hirano H. FAD-induced in vitro activation of glutathione reductase in the lens of B2 deficient rats [J]. Current eye research, 1984, 3(4): 663-665.

[4] He J, Hu ML, H YM, et al. Study on the optimum conditions for determination of glutathione reductase activity coefficient in whole blood [J]. Chinese Journal of Public Health, 2002, 18(5): 615-616.

相關(guān)系列產(chǎn)品:

BC1160/BC1165 谷*甘肽還原酶(GR)活性檢測試劑盒

BC1170/BC1175  還原型谷*甘肽(GSH)含量檢測試劑盒

BC1180/BC1185  氧化型谷*甘肽(G SSG)含量檢測試劑盒

BC1190/BC1195 谷*甘肽過氧化物酶(GSH-Px/GPX)活性檢測試劑盒


谷*甘肽還原酶活性系數(shù)檢測試劑盒 微量法 谷*甘肽還原酶活性系數(shù)檢測試劑盒 微量法

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